{"code":0,"msg":"","count":81,"data":[{"caddress1":"(西湖大学, 生命科学学院, 杭州 310000)","cauthor":"崔诗遥 张兵*","cintpic":"Upload/qianyan/25-01-21-15-40-12-530.pdf","clicktime":696,"clong1":"
间歇性禁食通过引发器官间互作抑制毛囊再生<\/span> 崔诗遥 张兵*<\/span><\/p> (西湖大学, 生命科学学院, 杭州 310000)<\/span><\/p> 【摘要】间歇性禁食因其潜在的健康益处而在全球范围内受到青睐。这种饮食方式不仅有助于改善代谢健康和体重控制, 还对组织健康产生了深远的影响。然而, 其具体作用机制尚不完全清楚。成体干细胞是组织更新和再生的核心驱动力, 位于特殊的“微环境”中, 该微环境通过整合局部和全身信号(包括神经、代谢和免疫等因素)精准调控干细胞的命运和行为, 从而影响组织和机体的整体健康。研究团队以毛囊干细胞(HFSCs)及毛囊再生为模型, 揭示了常见的间歇性禁食方案通过选择性诱导激活的毛囊干细胞凋亡来抑制毛囊再生的作用机制。这一现象与热量摄入减少、昼夜节律改变或mTORC1营养感应通路无关。相反, 禁食通过激活肾上腺与皮肤中真皮脂肪细胞的相互作用, 触发游离脂肪酸迅速释放至微环境, 干扰毛囊干细胞的代谢稳态, 并升高细胞活性氧水平,最终导致氧化损伤和细胞凋亡。此外, 一项在人群中开展的随机对照试验也表明, 间歇性禁食会抑制人类毛发生长。这一研究对间歇性禁食如何影响组织健康的根本机制进行了深入解析, 为理解其对组织再生和干细胞命运的影响提供了重要依据。<\/p> 【关键词】间歇性禁食; 成体干细胞; 毛囊干细胞; 毛囊再生; 毛发生长<\/p> Intermittent Fasting Triggers Interorgan Communication to Suppress Hair Follicle Regeneration<\/p> CUI Shiyao, ZHANG Bing*<\/span><\/p> (School of Life Sciences, Westlake University, Hangzhou 310000, China)<\/span><\/p> 【Abstract】Intermittent fasting has become increasingly popular worldwide due to its potential health benefits. This dietary strategy not only supports metabolic health and weight management but also exerts significant effects on tissue health. However, the underlying mechanisms remain largely unclear. Adult stem cells, the driving force behind tissue renewal and regeneration, are located within specialized “niches” that integrate local and systemic signals—such as neural, metabolic, and immune factors—to precisely regulate their fate and behavior. These processes are essential for maintaining tissue and overall organismal health. Using HFSCs (hair follicle stem cells) and hair follicle regeneration as a model, researchers discovered that intermittent fasting inhibits hair follicle regeneration by selectively inducing apoptosis in activated HFSCs. Notably, this effect is independent of calorie restriction, circadian rhythm changes, or the mTORC1 nutrient-sensing pathway. Instead, fasting activates interactions between the adrenal glands and dermal adipocytes, leading to a rapid release of free fatty acids into the HFSC niche. This disrupts the metabolic balance of HFSCs, elevates ROS (reactive oxygen species) levels, and causes oxidative damage, ultimately triggering cell apoptosis. Additionally, a randomized controlled trial in humans revealed that intermittent fasting suppresses hair growth. These findings provide critical insights into the mechanisms by which intermittent fasting influences tissue health, shedding light on its impact on tissue regeneration and stem cell dynamics.<\/p> 【Keywords】intermittent fasting; adult stem cells; hair follicle stem cells; hair follicle regeneration; hair growth<\/p> 1 间歇性禁食对组织健康的影响<\/p> 近年来, 多种饮食干预方式[如热量限制饮食、间歇性禁食(intermittent fasting, IF)、生酮饮食等]在多种生物体中展现出显著益处, 包括改善代谢健康、降低炎症水平和延长寿命[1-3], 因而在全球范围内广受欢迎[4-5]。间歇性禁食已在人群中被开发出多种具体方案, 并被广泛应用于临床和日常生活。据统计,美国18至80岁的人群中, 超过10%的人采用间歇性禁食作为饮食调控手段。然而, 尽管间歇性禁食的实践日益普及, 其对身体各系统的具体影响及作用机制仍未被完全阐明。<\/p> 在哺乳动物中, 机体对饮食变化的适应涉及多个层面, 从全身系统性变化到器官间的相互协作, 甚至延伸至单个细胞和亚细胞水平。成体干细胞是驱动机体各组织器官更新与再生的关键力量。这些干细胞位于独特的“生态位”(niche, 也称微环境)中, 生态位通过整合局部和全身多种信号, 决定干细胞的命运, 并在应对多种生理与环境变化时调控组织再生过程, 从而帮助动物适应自然环境和维持生存[6]。一些研究表明, 间歇性禁食可改善多种成体干细胞群体(如肠道、肌肉和造血系统)的功能及稳态维持能力[7-9]。然而, 间歇性禁食对外周组织(如皮肤)的具体影响尚不明确。<\/p> 从机制上看, 间歇性禁食通过延长进餐间隔、改变饮食节律以及减少总热量摄入对机体产生影响。然而, 目前尚不清楚这些因素中的哪一个在间歇性禁食对成体干细胞及组织再生的影响中起主要作用。此外, 间歇性禁食引起的全身性变化如何通过具体途径作用于外周组织, 以及这些信号在生态位中的哪类细胞中被感知并如何调控干细胞命运,这些问题尚未得到充分解答。值得注意的是, 成体干细胞通常表现出异于生态位其他细胞的独特代谢特征, 并在组织再生的不同阶段依赖不同的代谢途径。然而, 这些代谢特性如何塑造干细胞对间歇性禁食的响应, 目前仍不明确。接下来我们将以研究间歇性禁食对毛囊干细胞和毛囊再生的影响及机制为例[10], 介绍干细胞及其微环境对系统性代谢变化的响应, 为此类研究提供参考。<\/p> 2 常用的间歇性禁食方案会抑制毛囊再生<\/p> 在皮肤中, 毛囊经历生长期(anagen)、退行期(catagen)和休止期(telogen)的周期性变化, 其中毛囊干细胞(hair follicle stem cells, HFSCs)的周期性激活是驱动毛发新生的关键动力[11-12](图1A)。在休止期,毛囊干细胞处于其特有的生态位(hair bulge和hair germ)中, 保持休眠状态。当毛囊进入生长期时, 毛囊干细胞会短暂被激活, 进行自我更新并启动毛囊再生[13-14]。此外, 皮肤中的多种细胞类型围绕毛囊干细胞形成一个复杂的微环境, 可响应外界刺激或生理变化, 精确调控毛囊干细胞的再生活动[15]。<\/p> 为了探讨间歇性禁食对毛囊再生的影响, 我们采用了两种常见的间歇性禁食方案: 16/8限时进食(time restricted feeding, TRF), 即每日仅允许在8小时的进食窗口内进食, 其余16小时禁食; 隔日禁食(alternate day fasting, ADF), 即在24小时禁食期和24小时自由饮食期之间交替(图1B)。实验中, 我们选取P60的小鼠, 剃去背部毛发, 并使其在接下来的96天中分别接受不同饮食处理, 以观察毛发生长情况(图1C)。<\/p> 实验结果显示, 自由采食(ad libitum, AL)喂养的小鼠在P80左右进入生长期, 到P100时, 大部分背部毛发重新长出。而接受TRF或ADF饮食干预的小鼠则表现出显著的毛囊再生障碍: 即使到P156, 仍仅有部分背部毛发生长出来(图1C和图1D)。值得注意的是, 与先前研究一致[16-17], 间歇性禁食的小鼠表现出增强的葡萄糖耐受性, 说明代谢健康得到了改善。综上所述, 尽管间歇性禁食在代谢调控方面具有显著益处, 但我们的研究发现, 常见的间歇性禁食方案对毛囊再生产生了显著的抑制作用。<\/p> A: 小鼠毛发周期由毛囊干细胞(HFSCs)周期性激活驱动的示意图。B: 饮食干预模式的示意图, 包括自由进食(AL)、16/8限时进食(TRF)和隔日禁食(ADF)。进食从光照关闭后的Zeitgeber时间(ZT) 12开始。C: P60至P156期间接受AL、16/8 TRF和ADF处理的雌性小鼠毛发再生的进程。在开始处理前, 小鼠被剃毛(n=8~10)。D: 图B中小鼠毛发再生统计(n=5, 双因素方差分析)。<\/span><\/p> A: schematic of mouse hair cycle phases driven by the periodic activation of HFSCs. B: schematic of dietary intervention paradigms including AL, 16/8 TRF, and ADF. Feeding starts from Zeitgeber time (ZT) 12 after lights off. C: progression of hair regrowth in female mice subjected to AL, 16/8 TRF, and ADF between P60 and P156. Mice were shaved before treatments (n=8-10). D: quantification of the hair regrowth in mice in figure B (n=5, Two-Way ANOVA).<\/span><\/p> <\/span><\/p> 图1 间歇性禁食抑制毛囊再生(根据参考文献[10]修改)<\/span><\/p> Fig.1 Intermittent fasting inhibits hair follicle regeneration (modified from reference [10])<\/span><\/p> 3 延长的禁食时间选择性诱导激活的HFSC凋亡<\/p> 为了揭示毛囊再生受到抑制的原因, 我们从干细胞命运和行为角度入手展开研究。静止状态下的HFSC无法被激活是许多毛囊再生缺陷的常见成因[18-19]。因此, 我们从P24(此时小鼠的毛囊处于休止期, HFSC处于静止状态)开始对小鼠进行ADF处理, 并每日检测HFSC的激活状态(图2A)。结果显示, 在AL条件下, 小鼠在P26便开始激活HFSC(EdU+)并进入生长期。同样地, ADF处理的小鼠在P26也出现了相当数量的HFSC激活。然而, 在24小时禁食期结束后, 毛囊内EdU+ HFSC数量骤减, 同时伴随大量凋亡信号(aCAS3, active caspase-3)(图2A)。<\/p> 通过EdU追踪实验, 我们发现, 大多数凋亡的HFSC为EdU阳性, 表明这些细胞在凋亡前已被激活(图2B)。流式细胞术分析表明, 在ADF处理中, 大约25%的HFSC会在喂食阶段被激活(图2C), 其中约90%在随后的禁食期发生凋亡。这种周期性的激活与凋亡的循环导致了HFSC总数的显著减少(图2D和图2E)。<\/p> 一般认为, 间歇性禁食通过减少总卡路里摄入或改变饮食节律发挥作用。然而, 我们的研究显示,在间歇性禁食处理的小鼠中, 平均每日的卡路里摄入并未显著减少。此外, 无论禁食发生在白天还是夜晚, 都会导致毛囊再生延迟, 表明这一现象并非源于昼夜节律的改变。<\/p> 为了探究HFSC凋亡是否与禁食时间长短有关,我们让小鼠接受不同禁食时长的处理, 并检测HFSC的凋亡情况。结果发现, 在禁食8小时后, 毛囊内仅检测到少量凋亡信号。然而, 当禁食时间延长至16小时, 凋亡的HFSC显著增多, 并随着禁食时长的进一步延长而持续增加。值得注意的是, 凋亡现象在重新进食后逐渐消失(图2F)。这些数据表明, 延长禁食时间会诱导激活的HFSC发生凋亡, 从而阻碍毛囊再生。<\/p> A: 从P24开始接受自由进食(AL)和隔日禁食(ADF)处理的小鼠中毛囊干细胞(HFSCs)的激活与凋亡。Active caspase-3(aCAS3, n=30, 30个毛囊,来自5只小鼠, 单因素方差分析)。B: EdU追踪间歇性禁食下激活的HFSCs的命运(n=30个毛囊, 来自5只小鼠, 双尾非配对t检验)。C: 流式细胞术分析显示24小时禁食后EdU+HFSCs比例的下降。D: 流式细胞术分析显示24小时禁食后HFSCs总数的减少(n=3, 双尾非配对t检验)。E: 模型总结了间歇性禁食期间HFSCs的周期性激活与凋亡过程。F: HFSCs在24小时禁食和24小时再进食期间的凋亡时间进程。红色箭头标记了凋亡的HFSCs(n=30个毛囊, 来自5只小鼠, 单因素方差分析)。<\/span><\/p> A: activation and apoptosis of HFSCs in mice subjected to AL and ADF starting from P24. Active caspase-3 (aCAS3, n=30, HFs from five mice, One-Way ANOVA). B: tracing the fate of activated HFSCs upon intermittent fasting (n=30 HFs from five mice, two-tailed unpaired t-test). C: flow cytometry analysis showing the proportion of EdU+HFSCs. D: flow cytometry analysis showing the total number of HFSCs decrease after a 24-hour fasting period in ADF (n=3, two-tailed unpaired t-test). E: model summarizing the cyclic activation and apoptosis of HFSCs during intermittent fasting. F: time course of HFSC apoptosis along the 24-hour fasting and 24-hour refeeding periods. Red arrowheads mark the apoptotic HFSCs. (n=30 HFs from five mice, One-Way ANOVA).<\/span><\/p> <\/span><\/p> 图2 延长的禁食时间导致激活的HFSCs发生凋亡(根据参考文献[10]修改)<\/span><\/p> Fig.2 Extended duration of fasting induces apoptosis in activated HFSCs (modified from reference [10])<\/span><\/p> 4 禁食诱导的脂肪分解导致HFSC凋亡 我们发现, 延长的禁食时间会导致HFSC凋亡并抑制毛囊再生。那么, 这一现象的具体机制是什么呢?禁食引起的全身性营养水平暂时下降可能是关键因素, HFSC可能通过其细胞内的营养感应机制(nutrient sensing)直接感知这一变化[20], 进而引发凋亡。为验证这一假设, 我们在HFSC中敲除Tsc2基因(mTORC1信号通路的负调控因子), 以破坏其经典营养感知能力[21]。结果显示, 即便在Tsc2敲除的小鼠中, HFSC仍在禁食后发生显著凋亡, 表明禁食引起的HFSC凋亡并不依赖于mTORC1介导的细胞营养感应机制。<\/p> 延长禁食时间会引发一系列全身性适应反应,例如通过脂肪组织调动储存的能量。在皮肤中, 真皮脂肪细胞是HFSC微环境的重要组成部分[22-23](图3A)。我们进一步探讨禁食诱导的全身性变化是否会传递到皮肤, 并通过微环境中的脂肪细胞影响HFSC。研究发现, 在禁食24小时后, 真皮脂肪细胞发生剧烈的脂解, 分解储存的甘油三酯并向微环境释放大量游离脂肪酸(free fatty acid, FFA)(图3B)。在ADF小鼠中, 我们监测了24小时禁食期间的脂肪分解过程, 发现禁食16小时后, 真皮脂肪细胞出现显著脂解, 与毛囊中HFSC的凋亡同步发生(图2F和图3B)。这些数据表明, 禁食期间真皮脂肪细胞脂解与HFSC凋亡之间存在密切联系。<\/p> 为了确定真皮脂肪细胞脂解是否直接导致HFSC凋亡, 我们利用AdipoQCreER;Atglfl/fl小鼠敲除脂肪细胞中的甘油三酯脂肪酶(adipose triglyceride lipase, ATGL, 脂解的限速酶)[24]。在ATGL敲除小鼠中, 真皮脂肪细胞在禁食条件下无法进行脂解, 同时HFSC的凋亡显著减少(图3C)。接下来, 我们使用Lhx2CreER;Cpt1afl/fl小鼠, 在HFSC中特异性敲除肉碱棕榈酰转移酶1A(carnitine palmitoyltransferase 1A, CPT1A), 它是将自由脂肪酸转运至线粒体进行β氧化的限速酶[9]。结果显示, 尽管在CPT1A敲除小鼠中, 禁食引起的脂解依然存在,但HFSC的凋亡显著减少(图3D)。<\/p> 为进一步验证FFA是否能够独立诱导HFSC凋亡, 我们从真皮脂肪细胞中提取甘油三酯, 并通过气相色谱–质谱(GC-MS)分析FFA的组成, 发现棕榈酸(16:0)、油酸(18:1, 顺式-9)和亚油酸(18:2, 顺式-9,12)是最丰富的FFA类型。将这些FFA注射至自由饮食(AL)小鼠的皮肤中, 结果显示, 即使在无禁食的条件下, 这些FFA也能够显著诱导HFSC凋亡(图3E)。综上所述, 我们的研究表明, 禁食期间真皮脂肪细胞释放的过量FFA及其在HFSC中的β氧化是导致HFSC凋亡的主要原因, 从而抑制毛囊再生。<\/p> A: 全组织染色的真皮脂肪细胞(Plin1, 脂滴包被蛋白)和毛囊(K14)。B: 真皮脂肪细胞在24小时禁食和24小时再进食期间的脂解时间进程。α6标记毛囊轮廓, BODIPY标记脂滴(n=30, 30个脂滴, 来自3只小鼠, 单因素方差分析)。C: 在AdipoQCreER;Atglfl/fl(ATGL cKO)小鼠中观察到的真皮脂肪细胞的脂解(下方)和HFSCs的凋亡(上方)。D: 在Lhx2CreER;Cpt1afl/fl(CPT1A cKO)小鼠中, 在24小时禁食后的脂解和HFSCs凋亡(n=30, 30个毛囊,来自6只小鼠, 双尾非配对t检验)。E: 在自由饮食(AL)小鼠中皮内注射FFA后HFSCs的凋亡(n=30个毛囊, 来自3只小鼠, 单因素方差分析)。<\/span><\/p> A: whole-mount staining of dermal adipocytes (Plin1, marks the surface of lipid droplets) and HFs (K14). B: time course of dermal adipocyte lipolysis along the 24-hour fasting and 24-hour refeeding periods. α6 outlines the HF, and BODIPY marks lipid droplets (n=30, lipid droplets from three mice, One-Way ANOVA). C: lipolysis of dermal adipocytes (bottom) and apoptosis of HFSCs (top) in AdipoQCreER;Atglfl/fl (ATGL cKO) mice. D: Lhx2CreER;Cpt1afl/fl (CPT1A cKO) mice after 24-hour fasting (n=30, HFs from six mice, two-tailed unpaired t-test). E: apoptosis of HFSCs upon FFAs intradermal injection on AL mice. (n=30 HFs from 3 mice, One-Way ANOVA).<\/span><\/p> 图3 禁食诱导的微环境脂肪细胞脂解驱动HFSC凋亡(根据参考文献[10]修改)<\/span><\/p> Fig.3 Fasting-induced lipolysis in niche adipocytes drives HFSC apoptosis (modified from reference [10])<\/span><\/p> 5 禁食通过激活肾上腺抑制毛囊再生<\/p> 为了探究禁食信号如何传递到皮肤并诱导真皮脂肪细胞脂解从而导致HFSC凋亡, 我们首先关注了靠近真皮脂肪细胞的交感神经[25]。通过使用6-羟基多巴胺(6-hydroxydopamine, 6-OHDA)神经毒素去除皮肤中的交感神经[26]后发现, 即使交感神经被去除, 禁食时真皮脂肪细胞的脂解和HFSC的凋亡仍然存在, 这排除了交感神经支配的作用。另一种可能的机制涉及肾上腺, 其在调节机体对禁食的适应性反应中起着核心作用[27-29]。禁食会导致全身瘦素水平下降, 从而刺激下丘脑神经元, 通过下丘脑–垂体–肾上腺(HPA)轴启动激素级联反应, 促使肾上腺释放激素(主要为皮质酮和肾上腺素)进入血液。这些激素具有显著的促脂解功能。既往研究表明, β3-肾上腺素受体(beta-3 adrenergic receptor, ADRB3)和糖皮质激素受体(glucocorticoid receptor, GR)在真皮脂肪细胞中表达[30]。因此, 我们假设禁食激活肾上腺释放的激素诱导真皮脂肪细胞脂解, 从而介导禁食对HFSC和毛囊再生的影响。<\/p> 为验证这一假设, 我们监测了ADF小鼠在24小时禁食和24小时再喂食周期内血液中瘦素、肾上腺素和皮质酮的水平变化(图4A)。在禁食的最初12小时内, 这些激素水平保持相对稳定。然而, 在禁食超过12小时后, 瘦素水平显著下降, 同时肾上腺素和皮质酮水平显著升高, 表明肾上腺被激活(图4A)。这一现象与真皮脂肪细胞的显著脂解及HFSC的凋亡同步发生(图3B和图2F)。在重新进食后, 激素水平迅速恢复正常。这些数据表明, 禁食期间肾上腺激活、真皮脂肪细胞脂解及HFSC凋亡之间存在强相关性。我们在未禁食的情况下向皮肤内注射高浓度的皮质酮或肾上腺素, 发现真皮脂肪细胞发生剧烈脂解, 同时HFSC出现显著凋亡(图4B和图4C)。为验证肾上腺释放激素在这一过程中发挥主要作用,我们对小鼠进行了双侧肾上腺切除术(ADX), 并将其与假手术对照组一起接受ADF处理。结果显示,在ADX小鼠中, 禁食诱导的真皮脂肪细胞脂解和HFSC凋亡均显著减少(图4D和图4E)。因此, 我们的研究表明, 延长的禁食时间通过激活肾上腺释放脂解激素, 这些激素作用于真皮脂肪细胞, 诱导脂解并释放FFA, 诱导HFSC发生凋亡, 导致毛囊再生被抑制。<\/p> A: ELISA测量24小时禁食和24小时再喂养期间血浆瘦素、皮质酮和肾上腺素水平(n=5, 单因素方差分析)。B: 皮下注射皮质酮或肾上腺素引起真皮脂肪细胞的脂解。C: 皮下注射皮质酮或肾上腺素导致HFSC的凋亡(n=30, 30个毛囊来源于3只小鼠, 单因素方差分析)。D: 在肾上腺切除(ADX)小鼠中, 禁食诱导的真皮脂肪细胞脂解被挽救(n=30, 30个脂滴来源于3只小鼠, 单因素方差分析)。E: 在ADX小鼠中, 禁食诱导的HFSC凋亡被挽救(n=30, 30个毛囊来源于3只小鼠, 单因素方差分析)。<\/span><\/p> A: ELISA measurement of plasma leptin, corticosterone, and epinephrine levels during the 24-hour fasting and 24-hour refeeding periods (n=5, One-Way ANOVA). B: intradermal injection of corticosterone or epinephrine causes lipolysis of dermal adipocytes. C: apoptosis of HFSCs (n=30, HFs from three mice, One-Way ANOVA). D: fasting-induced lipolysis in dermal adipocytes was blocked in ADX mice. (n=30, lipid droplets from three mice,One-Way ANOVA). E: fasting-induced apoptosis of HFSCs was blocked in ADX mice. (n=30, HFs from three mice, One-Way ANOVA).<\/span><\/p> <\/span><\/p> 图4 禁食激活肾上腺引发niche脂肪细胞的脂解及HFSCs的凋亡(根据参考文献[10]修改)<\/span><\/p> Fig.4 Fasting activates adrenal glands to induce lipolysis in niche adipocytes and apoptosis in HFSCs (modified from reference [10])<\/span><\/p> 6 禁食引起HFSC中的ROS升高, 诱导细胞凋亡<\/p> 为了研究禁食引起 HFSC 死亡的分子机制, 我们使用荧光激活细胞分选(FACS)从对照组和禁食组小鼠中分离HFSC, 并进行了RNA测序, 发现禁食小鼠的HFSC显著上调了脂肪酸代谢、氧化应激反应和线粒体功能障碍相关的代谢和信号通路。由于细胞氧化应激通常来源于活性氧(ROS)的增加, 我们使用MitoSox染料对分离出的HFSC的线粒体超氧化物水平进行检测。结果显示, 在禁食24小时后, HFSC中的MitoSox信号显著增强, 表明线粒体ROS水平增加(图5A)。<\/p> 为了进一步验证禁食对HFSC线粒体功能的影响, 我们利用四甲基罗丹明甲酯(TMRM)检测线粒体膜电位, 发现禁食处理后的HFSC中TMRM信号明显减弱, 提示线粒体功能障碍(图5A)。此外, 通过8-氧鸟嘌呤(8-oxoG)染色观察到禁食HFSC中的氧化性DNA损伤增加, 表明禁食引发了更强的细胞氧化应激(图5B)。透射电子显微镜(TEM)图像显示, 禁食HFSC的线粒体嵴结构退化, 这是线粒体损伤的典型特征(图5C)。这些数据表明, 禁食通过促进脂肪酸氧化(fatty acid oxidation, FAO)和ROS生成, 导致HFSC发生氧化损伤并诱导细胞凋亡。在RNA-seq数据中, 我们发现与禁食期间不会发生凋亡的表皮干细胞(EpiSC)相比, HFSC中抗氧化基因表达水平较低, 使其更容易受到ROS的损害。因此, 我们尝试通过外源性抗氧化剂来缓解HFSC的氧化压力并防止细胞凋亡。结果显示, 局部涂抹维生素E或过表达关键抗氧化酶—过氧化氢酶(CAT)[31], 均能显著降低禁食诱导的HFSC凋亡, 并缓解禁食对毛囊再生的抑制(图5D和图5E)。<\/p> A: 通过MitoSox Red测量HFSCs中的mROS, 通过TMRM测量小鼠HFSCs在24小时禁食后的线粒体膜电位(n=3)。MitoSox阳性对照: 500 μmol/LH2O2; TMRM阳性对照: 碳酰氰基对氯苯基肼(CCCP, 氧化磷酸化解偶联剂)。B: 24小时禁食后HF中的8-oxoG染色(n=3)。C: 透射电镜下HFSCs的超微结构。伪彩表示正常HFSCs(绿色)和凋亡的HFSCs(红色)。白色箭头标记禁食后HFSC中损伤的线粒体(蓝色框)。D: VE的局部施用或过表达过氧化氢酶(CAT OE)可挽救HFSCs在禁食后的凋亡。E: 在ADF下接受 VE或CAT OE处理的小鼠毛发生长(n=3~5)。<\/span><\/p> A: measurement of mROS by MitoSox Red and mitochondrial membrane potential by TMRM in HFSCs from mice upon 24-hour fasting (n=3). Positive controls: 500 μmol/L H2O2 (for MitoSox), carbonyl cyanide m chlorophenylhydrazone (CCCP, an oxidative phosphorylation uncoupler, for TMRM). B: 8-oxoG staining of HFs after 24-hour fasting (n=3). C: ultrastructure of HFSCs under TEM. Pseudo-coloring indicates normal HFSCs (green) and apoptotic HFSCs (red). White arrowheads mark the damaged mitochondria in fasted HFSC (blue box). D: topical application of VE, or genetic overexpression of catalase (CAT OE) rescued HFSC apoptosis upon fasting. E: hair regrowth of mice receiving VE or CAT OE under ADF (n=3-5).<\/span><\/p> <\/span><\/p> 图5 HFSCs中的ROS升高导致凋亡, 增强抗氧化能力可防止HFSCs在禁食时的凋亡(根据参考文献[10]修改)<\/span><\/p> Fig.5 Elevated ROS in HFSCs leads to apoptosis, and enhancing antioxidant capability prevents HFSC apoptosis upon fasting (modified from reference [10])<\/span><\/p> 7 脂肪酸氧化诱导HFSC凋亡并抑制人类毛发生长 为了确定使用FFA是否也会诱导人类HFSC中的ROS升高和细胞凋亡, 我们使用健康供体的头皮毛囊建立了人类毛囊外植体培养模型, 并用FFA对其进行处理[32], 发现HFSC中处于活跃增殖状态的HFSC和祖细胞凋亡增加[33], 与我们在小鼠HFSC中的发现一致(图6A)。为了确定间歇性禁食是否影响人类的毛发生长, 我们进行了一项人群随机对照试验(RCT)研究(Westlake Precision Nutrition Study 2,Clinicaltrials.gov NCT05800730)。首要结局为间歇性禁食对血糖稳态的影响, 而毛发生长的变化则作为次要结局进行测量。为了确定毛发生长的变化,我们在基线期和干预期结束时进行头发生长速度测定: 剃掉头皮上1 cm2区域内的现有毛发, 然后测量3天后重新长出的头发的长度(图6B)。与我们在小鼠模型中的发现一致, 间歇性禁食组别的人表现出显著的毛发生长变缓: 与对照组相比, TRD组的平均毛发生长速度降低了18%(P=0.002 8, 图6C和图6D)。虽然毛干密度没有显示出显著变化, 但许多重新长出的头发长度变得更短、直径更细(图6E)。这表明间歇性禁食在人类中, 同样对HFSC和毛发生长产生不利影响。<\/p> A: 左图为对经FFA或载体处理的培养人毛囊(HFs)进行EdU和aCAS3全毛囊染色。右上图为对经FFA或对照处理的人毛囊进行aCAS3、角蛋白15(K15, 标记人毛囊干细胞的标志物)和EdU的染色(n=9~12个毛囊, 双尾非配对t检验)。B: Weprecision-2人类随机对照试验(RCT)中饮食干预的示意图。C: 干预最后3天的平均毛发生长速度(毫米/天)。D: 干预后毛发密度的变化。E: 在基线期或干预期剃毛后3天重新生长的毛发。红色箭头指示异常毛发。<\/span><\/p> A: left, whole-mount staining for EdU and aCAS3 of cultured human HFs treated with FFA or vehicle. Right top, staining for aCAS3, keratin 15 (K15, a marker for human HFSC), and EdU of human HFs treated with FFA or vehicle (n=9-12 HFs, two-tailed unpaired t-test). B: schematic of dietary intervention in the Weprecision-2 human RCT study. C: average hair growth speed (millimeter per day) in the last three days of intervention. D: changes in hair shaft density after intervention. E: hairs regrown three days post-shaving during baseline or intervention periods. Red arrowheads mark the abnormal hair shafts.<\/span><\/p> 图6 代谢切换到脂肪酸氧化(FAO)诱导HFSC凋亡并抑制人类毛发生长(根据参考文献[10]修改)<\/span><\/p> Fig.6 Metabolic switching to FAO induces HFSC apoptosis and inhibits hair growth in humans (modified from reference [10])<\/span><\/p> 8 总结与展望 间歇性禁食近年来已在全球范围内得到广泛应用, 尽管关于其代谢益处已有许多报道, 但这种剧烈的代谢波动对干细胞功能和组织更新的影响和机制, 仍然不清楚。在本研究中, 我们以毛囊干细胞和毛囊再生为模型, 发现间歇性禁食期间肾上腺和干细胞微环境中的脂肪细胞之间存在密切的器官间通讯, 结果促使激活的成体干细胞发生凋亡, 破坏了正常的组织再生过程。由于脂肪细胞是许多干细胞系统的常见微环境成分, 我们推测这也可能影响其他组织再生过程。在进化过程中, 野生动物和我们的人类祖先都面临着食物供应的波动, 使得禁食成为一种常见现象。这一机制可能使它们停止外周组织再生, 为大脑等更重要的器官节省资源, 从而促进适应和生存。同时, 我们的研究表明, 通过外源性补充抗氧化剂来增强HFSC的抗氧化能力可以显著减轻间歇性禁食对毛囊再生的抑制作用, 这为减轻间歇性禁食在应用中产生的不利影响提供了参考策略。<\/p> 我们的研究结果阐明了间歇性禁食深刻影响成体干细胞和组织生物学的原理和机制, 并概括出了研究此类影响的综合策略。考虑到间歇性禁食在全球范围内的广泛采用, 在未来, 彻底评估各种禁食方案对不同干细胞系统的影响将非常重要。了解不同干细胞和组织反应的复杂性对于优化人类的饮食干预策略, 减轻对组织生物学的不利影响同时保留其益处至关重要。<\/p> 参考文献 (References)<\/span><\/p> [1] LONGO V D, PANDA S. Fasting, circadian rhythms, and timerestricted feeding in healthy lifespan [J]. 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King Trust博士后奖金。2020年秋季入职西湖大学任研究员。张兵研究组的主要方向为系统性因素对皮肤干细胞的调控以及皮肤和毛发再生, 代表性研究工作在Nature、Cell<\/em>等国际学术期刊上发表。<\/p><\/td><\/tr><\/tbody><\/table> 肌肉干细胞对骨骼肌健康的多重调控<\/span> 胡苹1,2<\/sup>*<\/span><\/p> (1<\/sup>广州医科大学附属第五医院广东省生物靶向与诊治与康复工程技术研究中心, 广州 510005; 2<\/sup>广州国家实验室, 广州 510005)<\/span><\/p> 【摘要】肌肉干细胞是存在于成体骨骼肌中的一种组织干细胞, 能够特异性分化为肌管细胞,从而实现对骨骼肌损伤的修复, 是骨骼肌损伤修复再生的主要执行者。肌肉干细胞具有较高的异质性, 其命运转化受到微环境因子和细胞内源转录与表观遗传网络的精密调控。随着更多准确模拟患者表型的动物模型的建立, 在这些模型中的新研究结果表明肌肉干细胞病变是很多骨骼肌疾病发生和发展的重要原因, 同时肌肉干细胞功能退变也是青少年特发性脊柱侧弯等传统意义上的非骨骼肌疾病的发生与发展的重要原因。因此, 建立有功能的肌肉干细胞的体外长期扩增体系对于通过细胞治疗的方式治疗肌肉干细胞相关的骨骼肌和非骨骼肌疾病有重要意义。<\/p> 【关键词】肌肉干细胞; 再生; 骨骼肌疾病<\/p> The Multiple Roles of Muscle Stem Cells in Skeletal Muscle Health<\/p> HU Ping1,2<\/sup>*<\/span><\/p> (1<\/sup>Key Laboratory of Biological Targeting Diagnosis,Therapy and Rehabilitation of Guangdong Higher Education Institutes, the Fifth Affiliated Hospital of Guangzhou Medical University, Guangzhou 510005, China; <\/span>2<\/font><\/sup>Guangzhou Laboratory, Guangzhou 510005, China<\/span>)<\/span><\/p> 【Abstract】Muscle stem cells are a group of tissue stem cells present in skeletal muscles. Muscle stem cells can specifically differentiate to myotubes and support the regeneration of skeletal muscles. Muscle stem cells are the major executors of muscle regeneration. They are highly heterogeneous and regulated by a well knitted network of microenvironment and cell intrinsic molecular signaling. Not only many skeletal diseases but also nonmuscle diseases like adolescent idiopathic scoliosis turn out to be caused by the dysfunction of muscle stem cells. Therefore, muscle stem cell transplantation will improve and cure these stem cell related diseases. The establishment of the in vitro expansion system to expand functional muscle stem cells has great impacts on the development of cell therapies for these muscle stem cell related diseases.<\/p> 【Keywords】muscle stem cells; regeneration; muscle diseases<\/p> 1 肌肉干细胞与骨骼肌再生<\/p> 骨骼肌是体内最大的组织器官, 不仅能够通过收缩产生力, 支持集体的主动运动、姿态维持及呼吸, 而且具有重要的代谢和免疫调节功能。骨骼肌具有较强的再生能力, 能够高效修复日常活动导致的骨骼肌磨损及拉伤、扭伤等急性骨骼肌损伤[1-2]。骨骼肌的再生主要是由肌肉干细胞(muscle stem cells, MuSCs)执行的。MuSCs是存在于成体骨骼肌中的组织干细胞, 具有自我更新能力, 能够特异性地分化为肌管细胞, 从而实现对骨骼肌损伤的修复[3]。<\/p> 肌肉干细胞处在肌膜(membrane of myofibers)和基底膜(basal membrane)之间的干细胞巢(niche)中(图1)[4], 处于G0期的静息(quiescence)状态。在骨骼肌稳态下, 干细胞巢中的胞外基质(extracellular matrix, ECM)、多种分泌因子等共同构成稳定的微环境, 维持肌肉干细胞的静息[1,5]。在骨骼肌稳态时,MuSCs所处静息态的深浅程度并不相同, 有较强的异质性(heterogeneity)。一群表达Gli1的MuSCs处在更浅的静息状态, 在损伤发生时首先被动员[6]。损伤发生后, MuSCs被激活回归细胞周期, 进入细胞周期后, MuSCs经过短暂扩增, 分化为成肌细胞(myoblasts),成肌细胞经过扩增后, 一方面可以与受损肌纤维融合, 进行损伤修复; 另一方面, 也可以独立分化为肌管细胞(myotubes)后形成新的肌纤维, 完成损伤修复。同时, MuSCs也重新回到静息态, 为下一次的损伤修复做准备[1,5](图2)。这一过程贯穿整个生命周期, 对保持健康的骨骼肌至关重要。<\/p> 绝大多数MuSCs表达paired box家族转录因子Pax7。Pax7被认为是MuSCs的最重要的标志基因。有少量MuSCs不表达Pax7, 而表达同属paired box家族的转录因子Pax3。在正常骨骼肌损伤修复中, 由于Pax3+ MuSCs细胞数量很小, 因此其对再生的贡献非常小。但是Pax3+ MuSCs具有较低的内源活性氧(reactive oxygen species, ROS)水平, 在辐射等恶劣环境下具有更强的增殖能力[7-8]。Pax3+ MuSCs可能是在进化中被选择出来在体内用于在恶劣环境下保持骨骼肌再生能力, 维护骨骼肌功能的干细胞。<\/p> 图1 肌肉干细胞在骨骼肌中的位置(引自参考文献[4])<\/span><\/p> Fig.1 The localization of muscle stem cells (cited from reference [4])<\/span><\/p> 图2 肌肉干细胞在再生中的命运转变<\/span><\/p> Fig.2 The conversion of muscle stem cell fate during regeneration<\/span><\/p> <\/span> 2 肌肉干细胞的活性调控<\/p> 在骨骼肌稳态和损伤修复过程中, MuSCs从静息到激活, 从增殖到分化, 每一步命运改变都受到严格的调控。参与调控MuSCs命运转变的既包括多种微环境细胞和微环境因子, 也包括干细胞的多种内源信号通路。<\/p> 损伤发生时, 不仅损伤部位的物理和化学微环境会发生显著的改变, 而且还会有来自损伤部位的因子通过血管被运送到全身, 产生远程效应。例如,损伤小鼠后腿一侧骨骼肌之后, 损伤部位会产生肝生长因子激活因子(hepatocyte growth factor activator,HGFA), 远程调控对侧腿骨骼肌中的MuSCs, 激活其中的mTOR信号通路使其进入GAlert状态, 更快地响应损伤信号离开静息态激活[9]。对于Gli1+MuSC亚群的进一步研究表明, 感受对侧损伤信号进行响应的主要是Gli1+ MuSCs, GAlert主要来源于Gli1+MuSCs[6]。<\/p> 损伤发生后, MuSCs保持静息的微环境被破坏。损伤既会破坏肌膜和基底膜, 从而改变MuSCs周围的ECM种类和结构, 还会由于血管的破裂导致大量炎症细胞的浸润。除了细胞和ECM微环境的变化外,损伤还会导致大量细胞死亡, 从而导致多种细胞内容物的释放, 同时, 各种微环境细胞也会分泌多种因子, 造成MuSCs周围的化学微环境发生重大改变, 从而与细胞内源信号网络共同改变MuSCs的命运。<\/p> 在急性损伤发生的早期, 肌纤维受损后会发生大量死亡。这些受损肌纤维发生程序性坏死(necroptosis)。发生程序性坏死的肌纤维激活TNC(Tenasin C)的表达, 随着程序性坏死细胞膜的破裂,TNC随其他细胞内容物一起被释放到损伤部位, 进入MuSCs的微环境。TNC的N-端存在类EGF结构域(EGF like domain), 这一结构域可以模拟EGF与MuSCs的EGF受体(EGF receptor, EGFR)结合, 进而激活EGFR信号通路, 促进MuSCs的增殖[10]。<\/p> 受损肌纤维的存在还会激活免疫系统, 造成大量炎症细胞的浸润, 从而诱发急性炎症反应。这类在再生过程中发生的无菌炎症与感染诱发的炎症有很大的区别, 无菌炎症在骨骼肌再生中发挥重要的调控作用[1-2,10-11]。巨噬细胞在骨骼肌再生过程中分泌多种因子调控MuSCs从激活、增殖到分化的多种命运转换[1-2,11-12]。T细胞在损伤发生后被大量招募至损伤部位并被激活。由T细胞介导的炎症是骨骼肌再生所必需的, 缺乏T细胞的免疫缺陷型小鼠表现出明显的骨骼肌再生障碍, 移植T细胞可以纠正免疫缺陷小鼠的骨骼肌再生障碍, 说明T细胞在骨骼肌再生中扮演不可或缺的角色。进一步的研究发现,T细胞分泌的四种炎症因子(IL-1α、IL-13、TNFα、IFNγ)组合能够保持MuSCs的干性, 同时促进MuSCs的增殖, 实现具有干性的MuSCs的扩增[13]。大部分组织干细胞都难以在体外进行功能性扩增, 在体外培养后的组织干细胞或者无法有效扩增, 或者在扩增过程中丢失干性, 无法在体内支持再生。因此阐明体内组织干细胞的增殖原理对于建立组织干细胞在体外的高效功能性扩增体系具有重要的指导意义。<\/p> 基于对MuSCs体内免疫微环境的研究, 在体外MuSCs扩增体系中加入IL-1α、IL-13、TNFα、IFNγ四种炎症因子组合后, MuSCs在体外培养体系中的增殖能力显著增强。MuSCs在体外培养超过24小时后会发生干性丢失, 移植入体内后丧失在体内再生为肌纤维的能力。在加入四种炎症因子后, MuSCs可以在体外长期传代至p40, 每一代MuSCs均具有MuSCs的分子特征, 在移植入体内后均能够高效支持对急性损伤的修复。在体外长期扩增的MuSCs移植入体内之后, 能够进入体内的干细胞库, 进入静息状态。在体外长期扩增后的MuSCs在移植后不仅能够支持对移植时损伤的修复, 而且在发生后续骨骼肌损伤时, 进入体内干细胞库的MuSCs可以被再次激活, 支持对后续损伤的修复。加入四种炎症因子后培养的MuSCs在体内具有干细胞的全部性质, 说明通过模拟体内MuSCs的免疫微环境, 在体外可以高效扩增保持完整干性的有功能的MuSCs, 为骨骼肌损伤和骨骼肌疾病的细胞治疗提供足量的优秀种子细胞[13]。<\/p> 在受到微环境的调控的同时, MuSCs的增殖、分化等命运转换还受到复杂的表观遗传和转录调控。bHLH(basisc helix-loop-helix)家族转录因子MyoD长期以来被认为是肌向分化的核心转录因子[3,5], 能够进一步激活分化关键转录因子Myogenin的表达。Myogenin同样属于bHLH转录因子家族, 能够激活终末分化关键基因Myh1、MCK等的表达[1]。FoxO3能够与Pax7相互作用, 促进MuSCs中MyoD的表达,从而起始MuSCs的分化[14]。对全基因组转录因子的分析表明, FoxO3与MyoD共同决定MuSCs的超级增强子[15], 在MuSCs命运转换中发挥多面功能。FoxO3既能够在静息态MuSCs中促进静息, 抑制激活[16]; 又能够在激活的MuSCs中促进MyoD表达, 促进MuSCs分化[14]。转录辅因子Vgll4在MuSCs增殖时期作为Yap信号通路的抑制因子, 通过与YAP竞争性结合TEAD4转录因子, 抑制YAP靶基因CTGF等的转录, 防止MuSCs过度增殖。在分化起始时, Vgll4转变为转录激活辅因子, 通过与TEAD4和MyoD形成三元复合物, 激活Myogenin的转录[17]。<\/p> Myogenin基因的转录还受到DNA甲基化的调控。DNA双加氧酶Tet2可以通过氧化Myogenin增强子中MyoD结合位点附近的甲基化CpG岛, 进而降低MyoD结合位点附近的DNA甲基化水平, 从而稳定MyoD的结合。通过这一机制, Myogenin基因可以实现稳定的转录激活[18]。<\/p> MuSCs的命运转变还受到多种非编码RNA的调控。6种微小RNA(microRNAs, miRs) miR-1、miR-133a/b、miR-206、miR-208b、miR-499在骨骼肌中特异性高表达, 被称为myoMiRs, 调控骨骼肌的胚胎发育与成体骨骼肌中MuSCs的增殖与分化[19]。其他miRs在MuSCs中也发挥重要的调控作用[1]。这些miRs的表达水平受到宿主基因的转录及miRs的加工成熟等多方面的调控。例如, RNA结合蛋白Msi2与HuR共同抑制miR7a-1的成熟, miR7a-1通过结合节律基因Cry2 3′UTR序列抑制Cry2的翻译。Cry2能够促进MuSCs的分化, 因而Msi2和HuR这一对RNA结合蛋白通过双重抑制机制促进MuSCs的分化[20]。<\/p> 除了miRs外, 长非编码RNA也对MuSCs的命运转变发挥重要的调控作用。长非编码RNA Lnc17000113A16RIK通过促进肌源转录因子MEF2D的翻译进而促进MuSCs的翻译[21]。长非编码RNAMyolncR4能够编码微肽LEMP, 促进MuSCs的分化[22]。<\/p> MuSCs的内源性调控机制涉及细胞活动的方方面面, 还需要很多深入研究, 阐明MuSCs从静息到激活、从激活到增殖、从增殖到分化的多重命运转化的精密调控机制。<\/p> 3 肌肉干细胞与骨骼肌衰老和疾病<\/p> MuSCs不仅在骨骼肌损伤修复再生中作为再生的基本执行细胞发挥重要的作用, 而且也是骨骼肌衰老与疾病发生、发展的关键细胞群体。骨骼肌的衰老包括骨骼肌质量的降低、肌力等功能的衰减、再生能力减弱等。增龄导致的骨骼肌功能病态功能蜕变称为肌少症(sarcopenia)。目前肌少症的成因尚不清楚, 缺乏准确、客观、简便的早期诊断方法和有效的治疗方法。衰老的骨骼肌高表达分泌因子Dkk3, Dkk3能够抑制骨骼肌细胞中的Akt信号通路, 促进FoxO3和ꞵ-Catenin入核, 新入核的FoxO3与ꞵ-Catenin相互作用, 共同激活骨骼肌特异性E3泛素连接酶Atrogin 1和MurF 1的表达, 从而加速骨骼肌的萎缩。由于Dkk3是分泌因子, 因此一块骨骼肌的衰老可以诱导多块肌肉的衰老, 在全身“传染”[23]。除了肌肉萎缩之外, 由于MuSCs的增殖和分化能力减弱, 衰老骨骼肌的再生能力显著降低。衰老MuSCs的功能减弱受到多种因素的调控, 例如由于细胞自噬水平降低造成ROS的累积[24]。来源于衰老骨骼肌的MuSCs中的Msi2表达水平降低, 从而使得Msi2对miR-7a-1成熟的抑制能力降低, 提高成熟miR-7a-1在MuSCs中的表达水平, 抑制MuSCs的分化, 造成衰老骨骼肌的再生能力减弱[20]。针对这些衰老因素进行靶向干预能够延缓和逆转骨骼肌的衰老。例如, 通过RNAi敲低Dkk3的表达能够在衰老小鼠中有效地改善骨骼肌功能, 提高骨骼肌质量, 逆转骨骼肌衰老, 是潜在的肌少症治疗方法[23]。<\/p> 很多骨骼肌疾病也与MuSCs功能障碍密切相关。强直性肌营养不良(myotonic dystrophy, DM1)是一种多系统遗传疾病, 影响骨骼肌、平滑肌和心肌, 患者肌肉强直、无力、吞咽困难、心律失常、学习困难、发生白内障等, 目前没有有效的治疗药物。这一疾病是常染色体隐性遗传疾病, 由DMPK(myotonic dystrophy protein kinase)基因3′UTR区域的CTG重复序列异常扩增造成。在小鼠DMPK基因的3′UTR区域添加80个CTG重复单元模拟患者的基因突变获得的DM1疾病模型仅能够模拟患者的少数轻微症状, 无法模拟临床的复杂多系统病变。应用单倍体细胞“人造精子”技术构建DMPK及其邻近基因SIX5、DMWD、MBNL1的半敲除杂合小鼠, 能够模拟DM1临床患者的全部多系统病变, 揭示DMPK 3′UTR区域CTG重复序列的异常扩增导致染色质结构异常, 干扰DMPK基因及其邻近基因的表达。这一染色质结构异常导致的多基因表达异常使DM1多系统病变发生。应用这一新型DM1疾病模型小鼠, 发现DM1 MuSCs分化异常, 首次模拟出DM1患者中的MuSCs功能异常, 为DM1治疗药物开发提供了新的靶细胞[25]。<\/p> 杜氏肌营养不良(Duchenne muscular dystrophy,DMD)是由Dystrophin单基因突变导致的伴X隐性遗传疾病, 在男孩中的发病率为1/3 500。DMD主要表现为骨骼肌从远端向躯干中心的渐进性萎缩,在疾病晚期因呼吸系统并发症或心力衰竭而死亡。DMD长期以来被认为是由于终末分化的骨骼肌损毁而导致的疾病。通过模拟Dystrophin基因缺失制备了小鼠、狗、猪等动物模型, 这些模型在疾病机制研究、新药评价等工作中广泛应用[26-28]。但是,这些动物模型中DMD的进程与人类患者中的情况相去甚远, 使得对疾病进展的机制及药物评价的准确性不高。非人灵长类动物与人类在基因组序列上最为接近, 在生理、解剖、发育方面也高度相似, 能够更好地模拟人类疾病。通过CRSPR/Cas9介导的基因编辑技术, 科学家制备了DMD非人灵长类猕猴模型[29]。该模型在疾病发生的非常早期即可模拟DMD患者的下肢无力、表征肌肉损毁的血清学指标上调、步态改变等行为学特征, 以及肌肉严重纤维化、肌肉损毁等组织学表型。在DMD早期的非人灵长类模型中, 通过骨骼肌单细胞测序分析发现骨骼肌中有大量免疫细胞浸润, 与临床观察中看到的患者骨骼肌中免疫细胞增多, 发生炎症等症状相吻合[29]。对于骨骼肌中的FAPs(fibro-adipo progenitors)的研究表明, 与小鼠中的情况不同, 虽然骨骼肌发生了严重的纤维化, 但是FAPs细胞并没有大量增殖[29]。DMD非人灵长类模型中, FAPs细胞亚群之间的谱系关系紊乱, 同时所有亚群中纤维化相关基因的表达都显著上调, 提示DMD发病早期骨骼肌的纤维化可能是由于FAPs细胞中普遍的纤维化基因上调导致的。TGFꞵ信号通路是目前激活纤维化基因表达的主要信号通路。但是, DMD早期骨骼肌中的纤维化却不受TGFꞵ信号通路的调控。长期以来, DMD的发病机制一直被认为是肌纤维的持续损毁。持续的肌纤维损毁会激活MuSCs, 发生持续的骨骼肌损伤修复, 导致MuSCs耗竭。而在非人灵长类DMD模型中的研究则表明, MuSCs在疾病的早期即已经发生显著的细胞内源性改变, 细胞凋亡的比例升高, 表现出明显的细胞内源性分化障碍[29]。因此, DMD不仅是发生在分化肌纤维中的肌肉损毁的疾病, 同时也是一种干细胞疾病[29]。治疗DMD不仅要修正肌纤维中的问题, 而且要修正MuSCs的功能障碍, 为DMD的治疗提供了新的路径。<\/p> MuSCs不仅在传统的骨骼肌疾病中发挥重要的功能, 而且还在一些非骨骼肌疾病的进展中发挥作用。青少年特发性脊柱侧弯(adolescent idiopathic scoliosis, ALS)是多发于青春期女性中的疾病, 其发病原因不清楚。我们的研究表明, ALS中凹侧椎旁肌中的MuSCs中ESR1的表达水平显著下调, 进而导致ESR1信号通路下调。而凸侧椎旁肌中的MuSCs中ESR1的表达水平保持正常。ESR1信号通路水平下调导致MuSCs分化障碍。两侧椎旁肌中MuSCs功能的不对称导致凹侧椎旁肌的肌纤维直径变小, 力量减弱, 无法为脊柱提供平衡的支撑力量, 造成脊柱侧弯。在小鼠模型中通过抑制一侧椎旁肌中的ESR信号通路可以加速AIS的进展。在AIS小鼠模型的凹侧椎旁肌中通过注射FDA批准的药品雷洛昔芬能够重新激活ESR信号通路, 恢复MuSCs的分化能力,从而显著减缓AIS的进展[30]。这一工作揭示了肌肉力学支撑对于保持正常骨骼功能的重要作用, 为骨骼疾病的治疗提供了新的思路。<\/p> 最近的研究表明, 除了分化为骨骼肌外, 人MuSCs还具有肌腱分化潜能。在损伤的肌腱中移植MuSCs, 能够显著促进肌腱的修复, 改善运动功能[31]。肌腱损伤难以修复, 肌腱中虽然有肌腱干细胞/前体细胞存在, 但是由于其数量非常少, 在体外几乎无法扩增, 因而很难支撑再生医学应用。应用我们建立的功能MuSCs长期扩增体系, 能够获得足量优质的MuSCs, 以用于肌腱损伤修复, 为肌腱损伤的再生医学治疗提供了新的种子细胞。<\/p> MuSCs在多种疾病中的功能, 及针对MuSCs开发治疗方法尚需进一步深入研究。借助功能MuSCs体外长期阔体系通过干细胞移植进行细胞治疗等新的治疗方法为很多骨骼肌和非骨骼肌疾病的治疗带来了新的希望。<\/p> 4 展望与思考<\/p> MuSCs作为一种组织干细胞通过增殖分化直接支持骨骼肌的再生, 在骨骼肌的再生和稳态维持中发挥决定性的作用。MuSCs的研究和临床应用都需要面对MuSCs的异质性问题。MuSCs经历静息–激活–增殖–分化, 及静息态时的自我更新等多种细胞状态的转变, 单细胞测序的结果表明, 在再生过程中存在着很多处于上述状态之间的中间态细胞[32-33],使得细胞状态的异质性更为复杂。同时, 在MuSCs中还存在细胞内源性异质性, 例如Gli1+ MuSCs是一群处在更浅的静息态的MuSCs, 但是大多数静息态MuSCs在激活过程中并不经过Gli1表达的过程[6], 即Gli1+ MuSCs并不是静息态细胞激活过程中产生的中间态, 而是一个有独特基因表达模式的MuSCs亚群。在体内, 细胞状态的多样性和源于细胞内源性差异的亚群多样性组合在一起, 使得MuSCs具有很高的异质性。在疾病情况下, 异质性进一步加强[29]。进一步解析MuSCs的异质性及其驱动机制, 一方面可以加深对MuSCs细胞命运转变的路径选择的理解; 另一方面, 对于MuSCs异质性的研究有助于鉴定具有更高干性和更强增殖能力的MuSCs, 为MuSCs的临床应用提供更优的种子细胞。<\/p> 传统上MuSCs主要在骨骼肌损伤修复中发挥作用, 骨骼肌的衰老与多数疾病更多情况下被认为是终末分化的肌纤维的代谢、蛋白稳态被破坏, 发生功能退变而发生的。通过制备能够更准确地模拟患者表型的多种动物模型, 使得获取充足的骨骼肌样品进行深入研究成为可能。这些研究表明,MuSCs的病变在多种骨骼肌疾病的发病及进展中都发挥重要的作用。因此, 在治疗骨骼肌病变的时候,对MuSCs的功能校正也是治疗的重要考虑。此外,MuSCs的功能退变在一些非骨骼肌疾病的发生、发展中也发挥重要的作用。因此, 校正和增强MuSCs的功能不仅有望治疗骨骼肌疾病, 也可以用于非骨骼肌疾病的治疗。<\/p> 由于功能MuSCs体外长期扩增体系的建立,我们能够获得足量的优质MuSCs, 因此通过健康MuSCs移植或在MuSCs中进行基因编辑校正基因缺陷从而实现对骨骼肌疾病的治疗都成为可能。建立高效移植系统、追踪移植细胞在体内的功能及转归,进一步提高肌肉干细胞治疗的安全性和有效性都是骨骼肌疾病细胞治疗的重要研究方向。应用MuSCs进行疾病治疗有望治愈很多目前缺乏有效治疗方法的疾病。<\/p> 参考文献 (References)<\/span><\/p> [1] FU X, ZHUANG C L, HU P. 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